Сравнительное исследование ризосферной микрофлоры культиваров подсолнечника – Helianthus annuus (Asteráceae, Magnoliópsida), выращенных на почвах с техногенными полиэлементными аномалиями
https://doi.org/10.35885/1684-7318-2020-4-442-458
Аннотация
Ключевые слова
Об авторах
А. Ю. МуратоваРоссия
410049, Саратов, просп. Энтузиастов, 13
Н. А. Зеленова
Россия
410012, Саратов, Астраханская, 83
И. Ю. Сунгурцева
Россия
410049, Саратов, просп. Энтузиастов, 13
С. В. Горелова
Россия
300012, Тула, просп. Ленина, 92
А. П. Колбас
Беларусь
224016, Брест, бульвар Космонавтов, 21
Е. В. Плешакова
Россия
410012, Саратов, Астраханская, 83
Список литературы
1. Битюцкий Н. П. Микроэлементы и растения. СПб. : Изд-во С.-Петерб. ун-та, 1999. 230 с.
2. Временные методические рекомендации по контролю загрязнения почв : в 2 ч. / под ред. С. Г. Малахова. М. : Гидрометеоиздат, 1984. Ч. 2. 61 с.
3. ГН 2.1.7.2041-06. Предельно допустимые концентрации (ПДК) химических веществ в почве : Гигиенические нормативы / Фед. центр гигиены и эпидемиологии Роспотребнадзора. М., 2006. 15 с.
4. ГН 2.1.7.2511-09. Ориентировочно допустимые концентрации (ОДК) химических веществ в почве : Гигиенические нормативы / Фед. центр гигиены и эпидемиологии Роспотребнадзора. М., 2009. 10 с.
5. ГОСТ 26483-85. Почвы. Приготовление солевой вытяжки и определение ее рН по методу ЦИНАО. М. : Изд-во стандартов, 1985. 5 с.
6. ГОСТ 26488-85. Почвы. Определение нитратов по методу ЦИНАО. М. : Изд-во стандартов, 1985. 7 с.
7. ГОСТ 26489-85. Почвы. Определение обменного аммония по методу ЦИНАО. М. : Изд-во стандартов, 1985. 8 с.
8. Другов Ю. С., Родин А. А. Экологические анализы при разливах нефти и нефтепродуктов : практическое руководство. М. : БИНОМ, 2017. 270 с.
9. Колесников С. И., Пономарева С. В., Казеев К. Ш., Вальков В. Ф. Ранжирование химических элементов по степени их экологической опасности для почвы // Докл. РАСХН. 2010. № 1. С. 27 – 29.
10. Колесников С. И., Попович А. А., Казеев К. Ш., Вальков В. Ф. Влияние загрязнения фтором, бором, селеном, мышьяком на биологические свойства чернозема обыкновенного // Почвоведение. 2008. № 4. С. 448 – 453.
11. Марфенина О. Е. Антропогенная экология почвенных грибов. М. : Медицина для всех, 2005. 196 с. ОСТ 4641-76.
12. Методы агрохимических анализов почв. Определение подвижных форм фосфора и калия в почвах по методу Чирикова в модификации ЦИНАО. М., 1976. 14 с.
13. ПНД Ф 16.1:2:2.2:2.3:3.64-10. Методика измерений массовой доли нефтепродуктов в пробах почв, грунтов, донных отложений, илов, осадков сточных вод, отходов производства и потребления гравиметрическим методом / Фед. центр анализа и оценки техногенного воздействия. М., 2010. 18 с.
14. Строганова М. Н., Агаркова М. Г. Городские почвы : опыт изучения и систематики // Почвоведение. 1992. № 7. С. 16 – 24.
15. Строганова М. Н., Мягкова А. Д., Прокофьева Т. В. Роль почв в городских экосистемах // Почвоведение. 1997. № 1. С. 96 – 101.
16. Практикум по микробиологии / под ред. А. И. Нетрусова. М. : Академия, 2005. 608 с.
17. Фокина А. И., Ашихмина Т. Я., Домрачева Л. И., Горностаева Е. А. Тяжелые металлы как фактор изменения метаболизма у микроорганизмов (обзор) // Теоретическая и прикладная экология. 2015. № 2. С. 5 – 17.
18. Чиркин Л. А. Рентгенофлуоресцентный анализ объектов окружающей среды : учеб. пособие. Владимир : Изд-во Владим. гос. ун-та, 2009. 57 с.
19. Alaboudi K., Ahmeda B., Brodie G. Phytoremediation of Pb and Cd Contaminated Soils by Using Sunflower (Helianthus annuus) Plant // Annals of Agricultural Sciences. 2018. Vol. 63, iss. 1. P. 123 – 127. DOI: 10.1016/j.aoas.2018.05.007
20. Ashraf M. Y., Ashraf M., Mehmood K., Akhtar J., Hussain F., Arshad M. Phytoremediation of Saline Soils for Sustainable Agricultural Productivity // Plant Adaptation and Phytoremediation / eds. M. Ashraf, M. Ozturk, M. S. A. Ahmad. Dordrecht : Springer, 2010. P. 335 – 355. DOI: 10.1007/978-90-481-9370-7_15
21. Deng S., Caddell D., Yang J., Dahlen L., Washington L., Coleman-Derr D. Genome Wide Association Study Reveals Plant Loci Controlling Heritability of the Rhizosphere Microbiome // BioRxiv. 2020. P. 1 – 24. DOI: 10.1101/2020.02.21.960377
22. Dhiman S. S., Zhao X., Li J., Kim D., Kalia V. C., Kim I.-W., Kim J. Y., Lee J.-K. Metal Accumulation by Sunflower (Helianthus annuus L.) and the Efficacy of its Biomass in Enzymatic Saccharification // PLoS ONE. 2017. Vol. 12. P. e0175845. DOI: 10.1371/journal.pone.0175845
23. Govarthanan M., Mythili R., Selvankumar T., Kamala-Kannan S., Kim H. Mycophytoremediation of Arsenic- and Lead-contaminated Soils by Helianthus annuus and Wood Rot Fungi, Trichoderma sp. Isolated from Decayed Wood // Ecotoxicology and Environmental Safety. 2018. Vol. 151. P. 279 – 284. DOI: 10.1016/j.ecoenv.2018.01.020
24. Grishko V. N., Syshchikova O. V. Streptomyces Communities in Soils Polluted With Heavy Metals // Eurasian Soil Science. 2009. Vol. 42, № 2. P. 217 – 224. DOI: 10.1134/S1064229309020136
25. Hemida S. K., Omar S. A., Abdel-Mallek A. Y. Microbial Populations and Enzyme Activity in Soil Treated With Heavy Metals // Water, Air, Soil Pollution. 1997. Vol. 95, № 1 – 4. P. 13 – 22.
26. Joynt J., Bischoff M., Turco R., Konopka A., Nakatsu C. H. Microbial Community Analysis of Soils Contaminated With Lead, Chromium and Petroleum Hydrocarbons // Microbial Ecology. 2006. Vol. 51, № 2. Р. 209 – 219.
27. Kolbas A., Mench M., Herzig R., Nehnevajova E., Bes C. M. Copper Phytoextraction in Tandem With Oilseed Production Using Commercial Cultivars and Mutant Lines of Sunflower // International J. of Phytoremediation. 2011. Vol. 13. P. 55 – 76. DOI: 10.1080/15226514.2011.568536
28. Kötschau A., Büchel G., Einax J. W., von Tümpling W., Merten D. Sunflower (Helianthus annuus) : Phytoextraction Capacity for Heavy Metals on a Mining-influenced Area in Thuringia, Germany // Environmental Earth Sciences. 2014. Vol. 72, iss. 6. P. 2023 – 2031. DOI: 10.1007/s12665-014-3111-2
29. Leff J. W., Lynch R. C., Kane N. C., Fierer N. Plant Domestication and the Assembly of Bacterial and Fungal Communities Associated With Strains of the Common Sunflower, Helianthus annuus // New Phytologist. 2017. Vol. 214. P. 412 – 423. DOI: 10.1111/nph.14323
30. Lenart-Boroń A., Boroń P. The Effect of Industrial Heavy Metal Pollution on Microbial Abundance and Diversity in Soils – A Review // Environmental Risk Assessment of Soil Contamination Soil / ed. M. C. Hernandez-Soriano. Rijeka : InTech, 2014. P. 759 – 783. DOI: 10.5772/57406
31. Mench M., Dellise M., Bes C. M., Marchand L., Kolbas A., Le Coustumer Ph., Oustrière N. Phytomanagement and Remediation of Cu-contaminated Soils by High Yielding Crops at a Former Wood Preservation Site : Sunflower Biomass and Ionome // Frontiers in Ecology and Evolution. 2018. Vol. 6. Article 123. DOI: 10.3389/fevo.2018.00123
32. Mortvedt J. J. Heavy Metal Contaminants in Inorganic and Organic Fertilizers // Fertilizers and Environment / ed. C. Rodriguez-Barrueco. Dordrecht : Kluwer Academic Publishers, 1996. P. 5 – 11.
33. Nehnevajova E., Herzig R., Bourigault C´E., Bangerter S., Schwitzguebel J.-P. Stability of Enhanced Yield and Metal Uptake by Sunflower Mutants for Improved Phytoremediation // International J. of Phytoremediation. 2009. Vol. 11. P. 329 – 346. DOI: 10.1080/15226510802565394
34. Rizwan M., Ali S., Rizvi H., Rinklebe J., Tsang D. C. W., Meers E., Ok Y. S., Ishaque W. Phytomanagement of Heavy Metals in Contaminate Soils Using Sunflower – A Review // Critical Reviews in Environmental Science and Technology. 2016. Vol. 46. P. 1498 – 1528. DOI: 10.1080/10643389.2016.1248199
35. Schlemper T. R., Leite M. F. A., Luccheta A. R., Shimels M., Bouwmeester H. J., van Veen J. A., Kuramae E. E. Rhizobacterial Community Structure Differences Among Sorghum Cultivars in Different Growth Stages and Soils // FEMS Microbiology Ecology. 2017. Vol. 93, № 8. P. 1 – 11. DOI: 10.1093/femsec/fix096
36. Schlemper T. R., van Veen J. A., Kuramae E. E. Co-variation of Bacterial and Fungal Communities in Different Sorghum Cultivars and Growth Stages is Soil Dependent // Microbial Ecology. 2018. Vol. 76, iss. 1. P. 205 – 214. DOI: 10.1007/s00248-017-1108-6
37. Shirokikh I. G., Solov’eva E. S., Ashikhmina T. Y. Actinomycete Complexes in Soils of Industrial and Residential Zones in the City of Kirov // Eurasian Soil Science. 2014. Vol. 47, № 2. P. 89 – 95. DOI: 10.1134/S1064229313100062
38. Singh A., Prasad M. Reduction of Heavy Metal Load in Food Chain : Technology Assessment // Reviews in Environmental Science and Biotechnology. 2011. Vol. 10, № 3. P. 199 – 214. DOI: 10.1007/s11157-011-9241-z
39. Tejeda-Agredano M. C., Gallego S., Vila J., Grifoll M., Ortega-Calvo J. J., Cantos M. Influence of the Sunflower Rhizosphere on the Biodegradation of PAHs in Soil // Soil Biology and Biochemistry. 2013. Vol. 57. P. 830 – 840. DOI: 10.1016/j.soilbio.2012.08.008
40. Terekhova V. A., Shitikov V. K., Ivanova A. E., Kydralieva K. A. Assessment of the Ecological Risk of Technogenic Soil Pollution on the Basis of the Statistical Distribution of the Occurrence of Micromycete Species // Russian J. Ecology. 2017. Vol. 48, № 5. P. 417 – 424. DOI: 10.1134/S1067413617050125
41. Zhang X., Ma M., Zhenzhen W.U., Zhang Z., Gao R., Shi L. Effects of Helianthus annuus Varieties on rhizosphere Soil Enzyme Activities and Microbial Community Functional Diversity of Saline-alkali Land in Xinjiang // Acta Ecologica Sinica. 2017. Vol. 37, iss. 5. P. 1659 – 1666. DOI: 10.5846/stxb201510172095
Рецензия
Для цитирования:
Муратова А.Ю., Зеленова Н.А., Сунгурцева И.Ю., Горелова С.В., Колбас А.П., Плешакова Е.В. Сравнительное исследование ризосферной микрофлоры культиваров подсолнечника – Helianthus annuus (Asteráceae, Magnoliópsida), выращенных на почвах с техногенными полиэлементными аномалиями. ПОВОЛЖСКИЙ ЭКОЛОГИЧЕСКИЙ ЖУРНАЛ. 2020;(4):442-458. https://doi.org/10.35885/1684-7318-2020-4-442-458
For citation:
Muratova A.Yu., Zelenova N.A., Sungurtseva I.Yu., Gorelova S.V., Kolbas A.P., Pleshakova Ye.V. Comparative Study of the Rhizospheric Microflora of Sunflower Cultivars Helianthus annuus (Asteráceae, Magnoliópsida) Grown on Soils with Anthropogenic Polyelemental Anomalies. Povolzhskiy Journal of Ecology. 2020;(4):442-458. (In Russ.) https://doi.org/10.35885/1684-7318-2020-4-442-458